普朗醫療器械公司科普 通過血液細胞分析儀研究，血流流1s-1的重要性已經被越來越多的醫院所重視，但目前市場上很少見到真正能做到低切變率1s-1的粘度計。許多醫院誤信了推銷員的夸大其辭，所購儀器不能提供真實、可靠的1s-1數據。在此，有必要向用戶提供一些鑒定真偽的方法，以使用戶及廣大患者避免不必要的經濟損失及誤診的發生。
    首先請切記：實測1s-1的流變儀，它的結構設計應符合公認的測粘原理和科學的計算公式，否則，其質量和使用價值都是不可信的粘度（η）=切應力（τ）/ 切變率（r），請注意公式中的切應力（τ），也稱剪切應力，切變應力。對于人體切應力來源于心臟的收縮功能；通過體外診斷試劑對于毛細血管粘度計，該力來源于液層高度；對于旋轉式粘度計，來源于轉速。那么好，請計算您即將購買的粘度儀，它的切應力是否達到1s-1時的要求。即粘度一定、切變率設1s-1時，切應力等于粘度值。請檢查廠家文件，切應力技術指標是否滿足范圍。國際血液學標準化委員會要求,切應力范圍10~1000mPa。
    例：粘度油12.28mPaS切變率1s-1 ， 此時切應力為12.28mPa，如切應力大于該數據則儀器切應力技術指標達不到實測量1s-1的要求。
    其二：在不同切變率下，測試標準油粘度。尤其低切1s-1時檢測標準油粘度，低切1s-1時的誤差，直接反映了該儀器在1S-1時的參數修正，直接危害患者1s-1粘度的真實性。儀器只有在各個切變率下都能測準標準油，才有可能測準全血粘度。
    其三；加入本構方程參數的粘度計測粘時，高、中切值高時，低切才高。而血液粘度告訴我們：高切反應紅細胞變形性，低切反映紅細胞聚集性；大量臨床實踐也證明：許多低切高的病人高切是正常的。因此，采用本構方程推算1S-1粘度，可造成大量高切正常低切異常的病人漏診、誤診。
    其四：調整血球壓積鑒定法：理論上壓積高，全血粘度也會升高。溫度37ＯC時，壓積每提高5個單位，觀察1s-1時的粘度變化。如是真實數據應變化靈敏，重復性好，反之為模擬數據。
    ◆細胞聚集性測定方法及其應用
    紅細胞聚集性是血液非牛頓流動性的重要原因之一，它對于低切變率下的流動性有極大的影響。因此，在血液微流變學的血液細胞分析儀研究中，紅細胞的聚集性倍受人們重視，其重要性可與紅細胞的變形能力相當。
    第一節 紅細胞聚集性的粘度測定法
    一、 原理
    由于在低切變率下紅細胞會形成為緡錢狀的聚集體，這些網狀聚集使血液內部出現了立體結構，因而其流動時的阻力增大。換言之，低切變率下的紅細胞聚集使血液粘度升高，其升高程度與聚集程度之間呈正相關。這就是粘度測定可以評價紅細胞聚集性的基本原理。
    二、方法
    1、 低切變率下的血液相對粘度法
    根據最近國際上推薦的方法，低切變率下的血液相對粘度可以評價紅細胞聚集指數，即ηrel=ηb /ηp ，其中ηrel為相對粘度，ηb為血液粘度，ηp為血漿粘度。測定最好在37℃下進行，切變率可選1S-1，或與此接近的狀況。
    2、 血液粘度測定法之二—— 紅細胞聚集指數R法
    本方法由加拿大Brooks提出。他認為在一定切變率下血液的表觀粘度與能量耗散率有正比關系，存在紅細胞聚集體的懸浮液的能耗高于沒有聚集體的細胞懸浮液。因此，聚集與無聚集的細胞懸浮液的表觀粘度比值，應當能給細胞聚集程度提供一種度量。為此，他提出紅細胞聚集指數R，定義為；R= （η/η0）dex /（η/η0）sal 其中。（η/η0）dex為紅細胞懸浮于一定分子量的葡聚糖溶液的相對粘度（η0為葡聚糖溶液的粘度），（η/η0）sal為紅細胞懸浮于生理鹽水—EDTA溶液中的濃度。不言而喻，兩種細胞懸浮液的壓積應當相同，例如均選定30%的細胞壓積。R的數值與若干因素有關，例如葡聚糖的濃度、切變率的高低，Brooks曾做過一系列血液細胞分析儀實驗，我們選其中有代表性的一項，在葡聚糖的濃度為1—8g/100mL及切變率為0.27 S-1——107.5S-1范圍內，聚集指數R一般呈現先升后降的趨勢，并在葡聚糖濃度為3—4g/100mL處出現一個峰值。R值與切變率的關系也很明顯，在較低的切變率下，R值較大，這反映了低切變率下紅細胞聚集程度較高的事實。在高切變率下R值小于1，這是由于此時已不存在細胞聚集；另外，葡聚糖溶液作為懸浮劑本身要比生理鹽水-EDTA粘度大。
    由上可見，為了能評價紅細胞聚集程度，我們應該選擇那些細胞聚集—解聚共存的條件，也就是較低的切變率與合宜的葡聚糖濃度。例如在1s-1 左右的切變率，以及3g/100ml的葡聚糖濃度。
    （1） 準備有關的懸浮劑
    配制生理鹽水—EDTA溶液，濃度為0.15mol/L NaCl，5mmol/L NaHCO3及1mmol/L Na2EDTA。配制葡聚糖溶液，濃度為1—8g/100mL，葡聚糖分子量為70000。
    （2） 制備兩種紅細胞懸浮劑
    用離心洗脫血漿的方式，分別制備紅細胞的生理鹽水—EDTA溶液懸浮液及相應的葡聚糖懸浮液，一般應加懸浮劑離心洗脫三次。最終的紅細胞壓積可調節至30%。
    （3） 測定紅細胞懸浮液的表觀粘度
    采用旋轉式粘度計在低切變率下（例如1s-1）測定兩種紅細胞懸浮液于37℃（或25℃）下的表觀粘度。
    （4） 測定兩種懸浮劑本身的粘度
    用毛細管粘度計分別測定兩種懸浮劑的粘度，測定溫度為37℃（或25℃）。
    （5） 計算紅細胞聚集指數
    根據上述測定結果，用公式計算聚集指數R。
    測定方法與儀器選擇
    紅細胞聚集性不是一個物理學參量，它同液體的比重、溫度等物理量不同，后者不論用什么儀器或裝置來衡量，最后都可用一個量綱去描寫，并且得到的數值也應相同（實際上由于系統誤差等因素的影響，不同方法測出的數值只能相近）。正因為如此，我們才可以用不同的方式去描寫紅細胞的聚集程度，在粘度法中用比粘度（無量綱），在細胞沉降法中用沉降率（mm/h），在形態學方法中用Lamda，d（Heyn），在光密度法中用透光率，等等。任何一種方法的測定結果對紅細胞聚集程度的評價上有其共性，它們之間應當有正相關。
    值得提出的是，要根據實驗目的與設備條件兩個因素來選用測定方法。如果主要目的是醫學臨床檢驗，可能紅細胞沉降率最為簡易；如果實驗需要了解紅細胞聚集的全過程，則可能以形態學方法和光密度方法為佳。如果已經購置了旋轉式粘度計，而性能上又能進行低切變率（切變率可選1s-1，或與此接近的切變率）的血液粘度測定，則應以粘度法為該實驗室的首選測定紅細胞聚集法。因為，這樣不僅充分發揮了儀器功能，節省了不必要的添置，而且粘度法與血液的流動性聯系最密切，直接把紅細胞聚集性對血流的影響反映出來。

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